Biểu hiện gen tái tổ hợp trong Escherichia coli

Chương 7 Biểu hiện gen tái tổ hợp trong Escherichia coli Vector biểu hiện là vector có thể mang các gen ngoại lai mong muốn cho phép thực hiện sự phiên mã của các bản sao được tạo dòng và sự dịch mã các mRNA của chúng trong Escherichia coli. Những vector như thế được dùng để biểu hiện các gen của eukaryote trong E. coli hoặc tăng hiệu suất các sản phẩm của gen ở prokaryote. Mặc dù E. coli không phải là một vật chủ lý tưởng để biểu hiện các gen của eukaryote do chúng không có khả năng sửa đổi hậu dịch mã (post-translation modification) cho các chuỗi polypeptide của các protein có cấu trúc phức tạp. Tuy nhiên, trong một số trường hợp người ta vẫn có thể sử dụng vi khuẩn E. coli cho những protein có cấu trúc đơn giản hơn. Đối với những protein có cấu trúc phức tạp, vật chủ thường được sử dụng là các cơ thể eukaryote (ví dụ: nấm men Saccharomyces cerevisiae, nấm mốc Aspergillus niger…) do chúng có thể hậu dịch mã được. Để biểu hiện tất cả các gen ngoại lai trong E. coli phải bắt đầu bằng việc gắn đoạn gen ngoại lai vào trong vector biểu hiện (thường là plasmid). Vector này phải có đủ các cấu trúc cần thiết sau: - Trình tự khởi đầu sao chép (ori) để có thể tạo ra nhiều bản sao trong tế bào vật chủ. - Các trình tự mã hóa gen chỉ thị chọn lọc (selectable marker) để đảm bảo duy trì vector trong tế bào. - Một promoter kiểm soát phiên mã (ví dụ: lac, trp hoặc tac) cho phép sản xuất một lượng lớn mRNA từ các gen được tạo dòng. - Các trình tự kiểm soát dịch mã như trình tự liên kết ribosome được bố trí thích hợp và codon khởi đầu AUG. - Một polylinker để đưa gen ngoại lai vào trong một hướng chính xác với promoter. Chỉ khi được cấu trúc đầy đủ như thế, các vector biểu hiện mang gen ngoại lai mới được biến nạp vào chủng E. coli thích hợp. Chương này mô tả các phương pháp và các plasmid vector được sử dụng để sản xuất các protein dung hợp (fusion protein) và các protein nguyên thể (native protein) trong vi khuẩn. Các protein dung hợp có thể được sản xuất với một lượng lớn, dễ dàng tinh sạch và có thể được dùng để gây ra một đáp ứng miễn dịch. Các protein nguyên thể có thể được sản xuất trong vi khuẩn bằng cách gắn một promoter mạnh và một trình tự liên kết ribosome hiệu quả ngược hướng với gen được tạo dòng (vùng 5’ không dịch mã). Thông thường, các protein được biểu hiện ở mức độ cao trong các thể vùi không hòa tan. I. Sản xuất các protein dung hợp 1. Protein dung hợp Protein dung hợp (protein lai) được mã hóa bởi một gen lai do sự dung hợp in vitro hai đoạn gen khác nhau. Vì vậy, protein dung hợp sẽ mang trình tự amino acid của hai protein khác biệt (Hình 7.1). Hình 7.1. Protein dung hợp. Bao gồm gen được tạo dòng (gen A) và một gen khác của vi khuẩn (gen B), do đó protein dung hợp có chứa một phần protein của vi khuẩn. SD: đoạn Shine-Dalgarno. Sự dung hợp gen được thực hiện bằng cách gắn phần mã hóa của gen được tạo dòng ở gần đầu cuối 3’ của gen vi khuẩn (ví dụ: gen lacZ). Protein dung hợp có những ưu điểm sau: - Protein dung hợp thường được sản xuất với hàm lượng lớn do sự khởi đầu phiên mã và dịch mã được điều khiển bởi các trình tự tiêu chuẩn của E. coli. - Dung hợp các trình tự ngoại lai với các gen của E. coli thường cho kết quả các sản phẩm ổn định hơn các protein ngoại lai nguyên thể. - Protein dung hợp có khối lượng phân tử lớn hơn so với hầu hết các protein của E. coli và vì thế dễ dàng nhận biết trong điện di polyacrylamide gel của protein. Băng protein dung hợp có thể được cắt ra khỏi gel, đông khô (lyophilize) sau đó nghiền thành bột và dùng như một kháng nguyên. - Protein dung hợp có thể được tiết ra môi trường nhờ biểu hiện của vi khuẩn nếu gen eukaryote được gắn với trình tự mã hóa cho peptide tín hiệu (signal peptide), khi đó peptide sẽ này tạo ra sự chuyển dịch protein qua màng. Tuy nhiên, hiện tượng này chỉ xảy ra ở một vài trường hợp. 2. Các hệ thống vector biểu hiện các gen dung hợp với gen lacZ Một số hệ thống vector được phát triển để biểu hiện các gen dung hợp với gen lacZ. Chẳng hạn, các vector họ pUR có các vị trí tạo dòng BamHI, SalI, PstI, XbaI, HindIII và ClaI ở đầu 3’ của gen lacZ (Hình 7.2). Bằng cách chọn lựa các vector và vị trí cắt hạn chế thích hợp người ta có thể tiến hành dung hợp cho hầu hết gen được tạo dòng. Trong một số trường hợp, sự dung hợp có thể thực hiện bằng cách loại bỏ đầu tận cùng lồi hoặc làm đầy đầu tận cùng bị khuyết trước khi gắn. Một hệ thống vector tương tự khác cũng được phát triển để sản xuất các protein dung hợp, đó là các vector biểu hiện pEX1-3. Promoter PR được điều hòa và cảm ứng trong cùng một kiểu như promoter PL của bacteriophage l. Các vector pEX1-3 có các vị trí tạo dòng mang các điểm nhận biết EcoRI, SmaI, BamHI, SalI và PstI nằm ở đầu 3’ của gen lacZ. Các codon kết thúc dịch mã và các tín hiệu kết thúc phiên mã được đặt cùng hướng (downstream) với vị trí tạo dòng (Hình 7.3). Hình 7.2. Các vector họ pUR. Đây là các vector dung hợp với gen lacZ, có các vị trí tạo dòng BamHI, SalI, PstI, XbaI, HindIII và ClaI ở đầu 3’ của gen lacZ. Chèn đoạn DNA ngoại lai (cDNA) vào trong các vị trí tạo dòng thích hợp cho phép sản xuất protein dung hợp của b-galactosidase hoạt động với chuỗi peptide được mã hóa bởi DNA ngoại lai. Các vector pUR278, pUR288 và pUR289 chỉ chứa một vị trí PstI trong gen Ampr. Các vector pUR290, pUR291 và pUR292 chứa một vị trí PstI trong vùng tạo dòng do vị trí PstI trong gen Ampr đã bị loại bỏ. Sử dụng các plasmid vector này rất tiện lợi khi đoạn DNA ngoại lai quan tâm được tạo dòng trong vị trí PstI bằng phương pháp đuôi GC. Hình 7.3. Vector pEX2. Plasmid vector này dài khoảng 5,8 kb được thiết kế để biểu hiện đoạn DNA ngoại lai (cDNA) được dung hợp ở đầu 3’ của gen lacZ. Phần tận cùng amino của gen lacZ được thay thế bằng một số trình tự của gen cro của bacteriophage l và gen lacI của E. coli. Promoter PR của bacteriophage l (dùng để biểu hiện protein dung hợp) được điều hòa bởi gen ức chế cIts857 của bacteriophage l. Vùng tạo dòng hiện diện ở đầu 3’ của gen lacZ, tiếp theo là các codon kết thúc dịch mã (Stop) và tín hiệu kết thúc phiên mã (Term) của bacteriophage fd. 3. Xây dựng plasmid biểu hiện và phát hiện các protein dung hợp Gắn plasmid vector (pUR hoặc pEX) thích hợp với đoạn DNA ngoại lai để tạo ra một sự dung hợp trong khung đọc. Biến nạp các vector này vào E. coli (chủng K12 71/18 hoặc JM 103 cho các vector pUR, chủng M5219 cho các vector pEX). Kiểm tra các khuẩn lạc đơn mang đoạn DNA ngoại lai mong muốn bằng cách tách chiết DNA (DNA miniprep) của plasmid vector, sau đó cắt bằng enzyme hạn chế thích hợp và điện di kiểm tra trên agarose gel. Sàng lọc các khuẩn lạc sản xuất protein dung hợp. Phương pháp sàng lọc khuẩn lạc để phát hiện protein dung hợp được tiến hành như sau: Nuôi cấy qua đêm ở 37oC (một lượng nhỏ) từ 5-10 khuẩn lạc trong môi trường LB có chứa ampicillin. Sau đó, cảm ứng nuôi cấy bằng cách bổ sung thêm isopropylthio-β-galactoside (IPTG) cho vector pUR và tiếp tục nuôi ở 37oC, đối với vector pEX thì chuyển nuôi cấy 37oC lên nhiệt độ 40oC và tiếp tục nuôi cấy (có sục khí). Sau các khoảng thời gian nuôi cấy khác nhau (1, 2, 3 và 4 giờ…), lấy 1 mL dịch nuôi cấy ly tâm nhanh để thu tiểu thể, tái huyền phù chúng trong đệm 1´ SDS, biến tính ở 100oC trong 3 phút, ly tâm 12.000 g trong 1 phút ở nhiệt độ phòng. Tiến hành điện di SDS trên polyacrylamide gel 6%. Dùng dịch huyền phù tế bào chỉ mang một mình vector làm đối chứng. Protein dung hợp sẽ xuất hiện như là một băng mới dịch chuyển chậm hơn băng β-galactosidase trong đối chứng. 4. Tách chiết các protein dung hợp để sản xuất kháng thể Protein dung hợp có thể được tách chiết theo một số cách: dùng dịch chiết urea, sắc ký ái lực aminophenylthiogalactoside, điện di SDS-polyacrylamide gel hoặc phối hợp giữa các cách này. Phương pháp đơn giản nhất là điện di SDS-PAGE (sodium dodecylsulfate-polyacrylamide gel electrophoresis), như trình trình bày ở mục 3 (nuôi cấy một lượng lớn trong 200 mL). Nhuộm gel và phát hiện băng protein mới, sau đó cắt băng này ra khỏi gel, đông khô khoảng 2 ngày rồi nghiền thành bột mịn. Bột này sẽ được dùng tiêm vào thỏ để sản xuất kháng thể. II. Sản xuất các protein nguyên thể Các protein nguyên thể có thể được sản xuất trong E. coli bằng cách sử dụng promoter điều hòa mạnh và một trình tự liên kết ribosome hiệu quả. Để biểu hiện gen prokaryote có trình tự liên kết ribosome mạnh chỉ cần cung cấp một promoter là đủ. Trong khi đó, để biểu hiện một gen eukaryote (hoặc một gen prokaryote với một trình tự liên kết ribosome yếu) cần phải cung cấp cả promoter lẫn trình tự liên kết ribosome (Hình 7.4). Các mức độ biểu hiện có thể khác nhau từ dưới 1% cho tới hơn 30% protein hòa tan tổng số (total soluble protein) của tế bào. Hình 7.4. Protein nguyên thể. Gen tạo dòng (gen A) được đặt sau promoter và trình tự SD của vi khuẩn. mRNA chỉ mã hóa các amino acid đặc hiệu của đoạn chèn để tạo ra loại protein nguyên thể. § Biểu hiện của các gen ở prokaryote: Promoter Bước đầu tiên khi biểu hiện các protein của eukaryote trong vi khuẩn là chọn một vector biểu hiện mang promoter mạnh (strong promoter) của prokaryote. Promoter là trình tự DNA hướng dẫn RNA polymerase liên kết với DNA và khởi đầu sự tổng hợp RNA. Các promoter khác nhau có hiệu suất khác nhau, nói chung, promoter mạnh giúp các mRNA được khởi đầu ở tần số cao. Các promoter khác nhau đều mang hai đoạn bảo toàn cao, một được xác định khoảng 10 bp và một khoảng 35 bp nằm ở vùng ngược hướng (upstream) với điểm khởi đầu của sự phiên mã (còn gọi là vùng 5’ không dịch mã-5’ untranslation region). Hai đoạn này được đánh giá rất quan trọng trong việc xác định cường độ của promoter. Các promoter thích hợp nhất cho biểu hiện của gen ngoại lai ở E. coli là những promoter mà cả hai cường độ và khả năng điều hòa thể hiện mạnh. Nếu sản phẩm của gen được tạo dòng là độc (toxin) đối với các tế bào E. coli thì sau đó sự nhân đôi gen sẽ làm cho cường độ promoter yếu và promoter không điều hòa được. Sự phiên mã ở mức độ cao có thể gây trở ngại cho việc sao chép DNA của plasmid và dẫn đến tính không ổn định của plasmid. Phần này giới thiệu các vector biểu hiện mang promoter PL của bacteriophage l, promoter (lai) trp-lac và promoter bacteriophage T7. 1. Promoter PL của bacteriophage l Promoter PL của phage l (Hình 7.5) là một promoter mạnh, có khả năng điều hòa tốt và được dùng trong một số vector biểu hiện. Ở nhiệt độ thấp (31oC), promoter PL được duy trì ở trạng thái bị ức chế bởi sản phẩm của gen cI. Sau khi hoạt tính của gen ức chế bị phá hủy bằng cách tăng nhiệt độ nuôi cấy thì promoter PL sẽ xúc tiến phiên mã phần lớn mRNA. Một vài vector sử dụng promoter PL của l như: pPLa 2311, pPLa 8 và pKC30. Hình 7.5. Vector pKC30. pKC30 là plasmid có kích thước xấp xỉ 6,4 kb, mang promoter PL của bacteriophage l và vị trí nhận biết HpaI nằm ở vùng cùng hướng (có 321 nucleotides) với vị trí khởi đầu phiên mã của PL. Plasmid này là dạng phân chia của vector pBR322 và chứa đoạn HindIII-BamHI có nguồn gốc từ bacteriophage l được chèn vào giữa các vị trí HindIII và BamHI của vector. Đoạn chèn cDNA mang tín hiệu promoter (PL), một vị trí được nhận biết bởi sản phẩm của gen N (nutL), bản thân gen N, và tín hiệu kết thúc phiên mã phụ thuộc rho (tL). Vị trí nhận biết HpaI nằm với vùng mã hóa của gen N. Các trình tự DNA được chèn vào trong vị trí HpaI có thể được điều chỉnh bằng cách chuyển plasmid tái tổ hợp vào thể tiềm tan của bacteriophage mẫn cảm với nhiệt độ (cIts857). Các tế bào được sinh trưởng đến giữa pha log ở 30oC và sau đó thay đổi tới 40oC để bất hoạt sản phẩm của gen cI và mở promoter PL. Vector này được dùng để biểu hiện protein cII của bacteriophage l với một mức độ khoảng 4% protein hòa tan tổng số của tế bào. 2. Promoter trp-lac Sự biểu hiện của các gen được tạo dòng trong vi khuẩn E. coli còn được điều hòa bằng các promoter khác. Chẳng hạn promoter tac (một dạng promoter lai giữa promoter trp và promoter lac) đã được sử dụng thành công để sản xuất một lượng lớn protein trong E. coli (Hình 7.6). - Promoter trp được điều hòa bởi gen ức chế trp và có thể được cảm ứng bởi sự bổ sung 3-IAA (3-indolylacetic acid) vào môi trường, hoặc bằng cách thiếu tryptophan. - Promoter lac được điều hòa bởi gen ức chế lac và vì thế có thể được cảm ứng bởi sự bổ sung nhân tố cảm ứng IPTG cho nuôi cấy vi khuẩn. - Cuối cùng promoter lai trp-lac chứa đoạn trp-35 gắn với đoạn lac-10 và operator lac được Boer và cs thiết kế năm 1982, promoter lai trp-lac được điều hòa bởi gen ức chế lac (lac repressor). Hình 7.6. Vector pKK177-3. pKK177-3 là một tac vector chứa các vị trí tạo dòng gen ngoại lai cùng hướng với promoter tac. Cùng hướng với các vị trí tạo dòng là rrnB mang gen 5S của E. coli và hai nhân tố kết thúc phiên mã T1 và T2. 3. Promoter bacteriophage T7 Một hệ thống biểu hiện khác đã được phát triển bởi Tabor và Richardson (1985), Studier và Moffatt (1986) đó là hệ thống bacteriophage T7 RNA polymerase/promoter (Hình 7.7). Hệ thống này được thiết kế cho các biểu hiện có chọn lọc của gen được tạo dòng. Chúng cho phép mức độ biểu hiện cao của một vài gen không được biểu hiện hiệu quả trong các hệ thống khác. Hình 7.7. Vector pET-3 mang promoter (PФ10) của bacteriophage T7 Ф10 và yếu tố kết thúc phiên mã Ф (TФ). Yếu tố kết thúc phiên mã có thể tạo ra các thể phiên mã có sức đề kháng mạnh hơn đối với hoạt tính exonuclease. Vector pET-3a là dạng phân chia của vector pET-3 trong đó vùng khởi đầu dịch mã (S10) của bacteriophage T7 Ф10 (protein chính của vỏ bacteriophage T7) có mang vị trí BamHI ở codon 11 được đã chèn vào. Vị trí NdeI (CATATG) được đặt ở vùng khởi đầu dịch mã và có thể được sử dụng để xây dựng plasmid biểu hiện các protein nguyên thể. Hình 7.8. Vector pAS1. Vector pAS1 là một plasmid dài khoảng 5,8 kb mang promoter PL của bacteriohage l và vị trí cắt hạn chế duy nhất BamHI định vị ở codon khởi đầu ATG của gen cII của bacteriophage l. Plasmid này có nguồn gốc từ pKC30, trong đó gen cII của bacteriophage l được chèn vào ở vị trí HpaI. Gen cII sau đó được cắt bỏ bởi enzyme exonuclease cho tới khi chỉ còn lại codon khởi đầu ATG (G của ATG là nucleotide đầu tiên của vị trí BamHI). Để biểu hiện gen bị mất codon khởi đầu, pAS1 được cắt bằng BamHI và sau đó xử lý với enzyme mung-bean nuclease hoặc nuclease S1 để loại bỏ đầu lồi (đầu tận cùng sợi đơn). Gắn DNA đầu bằng này với đoạn DNA đầu bằng bắt đầu với codon thứ hai của gen được biểu hiện đặt gen đó trong khung với ATG. Các gen được chèn vào theo kiểu này được điều hòa bằng cách chuyển plasmid tái tổ hợp vào trong thể tiềm tan mẫn cảm nhiệt độ của bacteriophage l (cIts857). Các tế bào sinh trưởng tới pha log muộn ở 30oC và sau đó nâng lên 40oC để bất hoạt gen ức chế (repressor) và mở promoter PL. Gen được chèn vào cũng có thể được điều hòa bằng hoạt động của protein N ở nutL và nutR để ngăn cản kết thúc ở tR. Hiệu suất dịch mã của mRNA chịu sự chi phối của một vài yếu tố: - Mức độ bổ sung giữa chuỗi SD và đầu 3’ của 16S rRNA. - Khoảng cách giữa chuỗi SD và codon AUG để chuỗi DNA của eukaryote định vị. - Nucleotide theo sau AUG ảnh hưởng sự liên kết ribosome. Đưa codon ATG vào trong gen được tạo dòng và duy trì vị trí liên kết ribosome (RBS) của vi khuẩn bằng cách dùng vector pAS1 (Hình 7.8). Vector pAS1 mang promoter PL và RBS của gen cII của bacteriophage l, codon khởi đầu ATG được dung hợp trực tiếp với phần mã hóa đầu tận cùng amino của gen eukaryote muốn biểu hiện. Cách làm này có thể hạn chế việc tối ưu khoảng cách giữa chuỗi SD của vi khuẩn và codon khởi đầu ATG của gen eukaryote để có được sự biểu hiện hiệu quả của gen. Đoạn DNA có gắn promoter và chuỗi SD sau đó được biến nạp vào các chủng E. coli thích hợp. Sàng lọc thể biến nạp để thu các khuẩn lạc có mức độ phiên mã cao. III. Xác định mức độ biểu hiện của gen được tạo dòng Nói chung có ba cách thường được dùng để đánh giá mức độ biểu hiện protein ngoại lai của gen được tạo dòng: - Điện di polyacrylamide gel để xác định protein có kích thước thích hợp được sản xuất ở mức độ cao trong các tế bào mang vector biểu hiện. Thông thường, protein quan tâm có thể quan sát bằng cách nhuộm gel với Coomassie Brilliant Blue hoặc bằng thuốc nhuộm bạc. Nếu không thấy có băng protein mới khi dùng các thuốc nhuộm này, thì đánh dấu sự trao đổi chất với 100 µCi của [35S]Met hoặc [35S]Cys trên 1 mL dịch nuôi cấy trong 5 phút. Điện di SDS-polyacrylamide gel và thực hiện phóng xạ tự ghi có thể cho phép phát hiện protein quan tâm. - Phân tích Western blot bằng cách dùng các kháng thể liên kết đặc hiệu với protein quan tâm đã được thẩm tích lên màng nitrocellulose sau khi thực hiện diện di SDS-PAGE (xem chương 2). - Nếu mức độ biểu hiện thấp thì nên đặt gen lacZ cùng hướng với gen được biểu hiện. Như vậy, nếu sự phiên mã hoặc dịch mã hạn chế biểu hiện của gen thì những thay đổi trong hệ thống biểu hiện có thể được kiểm soát bằng những thay đổi trong hoạt tính của β-galactosidase. 1. Western blot Phản ứng liên kết kháng nguyên-kháng thể có tính đặc hiệu rất cao. Vì vậy, có thể áp dụng phản ứng này để phát hiện sự có mặt và tinh sạch protein. Kháng thể (antibody) được sản xuất khi đưa kháng nguyên vào thỏ và được tinh sạch từ máu thỏ sau khi gây nhiễm. Những kháng thể tạo ra bằng cách này là những kháng thể đa dòng (polyclonal antibodies-do các tế bào lympho khác nhau tiết ra), do đó chúng có khả năng nhận biết một số kháng nguyên. Ngược lại, kháng thể đơn dòng (monoclonal antibodies) chỉ tương tác với một kháng nguyên nhất định. Hình 7.9. Sơ đồ kỹ thuật Western blot Kháng thể được đánh dấu bằng bằng enzyme (hoặc bằng chất phát huỳnh quang) để phát hiện protein đặc hiệu (thường được thẩm tích lên màng nitrocellulose sau khi chạy điện di SDS-PAGE, và cố định ở đó) thông qua kỹ thuật Western blot (hoặc immunoblot) (Hình 7.9). Cơ chế của phản ứng liên kết kháng nguyên-kháng thể được trình bày ở hình 7.10. Sau khi protein trên màng lai gắn với kháng thể thứ nhất đặc hiệu và tiếp đến là kháng thể thứ hai có đánh dấu enzyme (alkaline phosphatase, horse-radish peroxidase…) thì phức hợp này sẽ được liên kết với cơ chất để tạo màu. Sự hiện diện của protein ngoại lai (sản phẩm dịch mã của gen ngoại lai được chuyển vào tế bào vật chủ) sẽ được phát hiện nhờ sự xuất hiện màu của phản ứng lai. Hình 7.10. Sơ đồ mô tả liên kết protein (kháng nguyên) với kháng thể thứ nhất đặc hiệu và kháng thể thứ hai có đánh dấu enzyme trong Western blot Sự phân bố của protein đặc hiệu trong tế bào và tổ chức mô cũng có thể phát hiện bằng kỹ thuật lai in situ (in situ hybridization) với nguyên tắc tương tự Western blot. Ngoài ra, kháng thể được sử dụng để tinh sạch protein đặc hiệu bằng kết tủa miễn dịch hoặc sắc ký ái lực (affinity chromatography). Kháng thể đánh dấu được dùng để định lượng kháng nguyên trong kỹ thuật xét nghiệm hấp thụ miễn dịch liên kết enzyme (enzyme-linked immunosorbent assay) gọi tắt là ELISA. 2. ELISA ELISA là một kỹ thuật hóa sinh, cũng dựa trên phản ứng liên kết kháng nguyên-kháng thể, được dùng chủ yếu trong miễn dịch học để phát hiện sự có mặt của kháng thể hoặc kháng nguyên trong mẫu. Tương tự kỹ thuật Western blot, trong ELISA người thường dùng hai loại kháng thể. Một kháng thể đặc hiệu với kháng nguyên protein (kháng thể thứ nhất). Một kháng thể khác, phản ứng với các phức hợp kháng thể-kháng nguyên, được kết hợp với enzyme (kháng thể thứ hai). Kháng thể thứ hai nhờ có liên kết với enzyme (như tên của kỹ thuật xét nghiệm) nên có thể bắt màu với cơ chất để tạo ra tín hiệu (Hình 7.11). Hình 7.11. Sơ đồ kỹ thuật ELISA Do ELISA có thể thực hiện để đánh giá sự có mặt của kháng nguyên hoặc kháng thể trong mẫu bằng phương pháp quang phổ (đo độ hấp thụ quang), cho nên nó là công cụ hữu ích để xác định nồng độ (định lượng) kháng nguyên và kháng thể. IV. Tăng mức độ biểu hiện của gen được tạo dòng Các mức độ biểu hiện của gen ngoại lai trong E. coli thường được kiểm tra bằng thử nghiệm chức năng hoặc bằng các xét nghiệm miễn dịch khác nhau